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生物学における実習技能 I

Pearson Edexcel · International A-Level · Biology · トピック 3

練習する
3.1

手を使わずに手の能力を試す試験

ブネジウ试剂をブドウ糖に加えて攪拌し、根尖を潰し、ビートルートを洗浄して水が透明になるまで洗った。WBI13 は、これらの作業について具体的に記述することを求める:各ステップが行われた理由、公平な実験であるための条件、データを表やグラフに変換する方法、そして結果が本当に示す内容である。試験に新しい理論はない——実際に実習を行った者の視点から見たUnits 1 と 2 である。

WBI13/01 Practical Skills in Biology I は第3のIASユニットである:1 時間20 分、50 点、全問必須、通常は基礎実習の文脈に基づく3つの長問形式である。電卓と定規が必要である。指定評価項目には、実習文脈での問題解決、設計および手順へのコメント、データの提示、不確実性や誤差を参照した結果の評価、変数の特定、グラフのプロットと解釈、Appendix 6 の数学的スキルを用いたデータ処理、器具および技術の知識、仮説を検証するための調査計画立案が含まれる。

尊重すべき質問語:justify — 各ステップには、なぜそれがデータを有効にするかという理由を添えること(例:ビートルートの洗浄は切断面からの色素除去を行うため、測定された吸光度は膜透過性を反映しており、切削による損傷ではない)。

English 日本語
absolute uncertainty/ˈæbsəluːt ʌnˈsɜːtənti/ 絶対不確かさ
anomalous result/əˈnɒmələs rɪˈzʌlt/ 異常値
bar chart/bɑː tʃɑːt/ 棒グラフ
colorimeter/ˌkʌləˈrɪmɪtə/ 色度計
control treatment/kənˈtrəʊl ˈtriːtmənt/ 対照処理
control variable/kənˈtrəʊl ˈveərɪəbl/ 統制変数
dependent variable/dɪˈpendənt ˈveərɪəbl/ 従属変数
error bars/ˈerə bɑːz/ 誤差線
gradient/ˈɡreɪdɪənt/ 勾配
graticule/ˈɡrætɪkjuːl/ 接眼マイクロメータ
hypothesis/haɪˈpɒθəsɪs/ 仮説
independent variable/ˌɪndɪˈpendənt ˈveərɪəbl/ 独立変数
line graph/laɪn ɡræf/ 折れ線グラフ
mitotic index/maɪˈtɒtɪk ˈɪndeks/ 有糸分裂指数
Percentage uncertainty/pəˈsentɪdʒ ʌnˈsɜːtənti/ 百分率不確かさ
semi-quantitative/ˈsemi ˈkwɒntɪteɪtɪv/ 半定量的
Significant figures/sɪɡˈnɪfɪkənt ˈfɪɡəz/ 有効数字
standard deviation/ˈstændəd ˌdiːvɪˈeɪʃn/ 標準偏差
systematic error/ˌsɪstəˈmætɪk ˈerə/ 系統誤差
uncertainties/ʌnˈsɜːtəntiz/ 不確かさ
3.1

変数と公平な実験

任意の調査における3つの変数の役割:独立変数は変更され、従属変数は測定され、統制変数は一定に保たれる(ビートルートの例付き)。 *任意の研究における3つの変数役割、ビートルーツの例、および対照処理。

独立変数は意図的に変更するもの(トリフルラリンの有無または濃度;アルコール濃度)。従属変数は測定するもの(各有糸分裂期の細胞の割合;漏出色素の吸光度)。従属変数に影響しうる他の要素はすべて統制変数であり、温度(膜流動性と酵素作用を変えるため)、溶液の体積(色素を希釈する度合いが異なるため)など、理由を添えて一定に保つ。変数とその理由を述べること——採点基準には両方が必要である。

統制処置とは、変更されない完全な処置(トリフルラリンを含まない溶媒;メタノールではなく水)であり、これにより生じる差異を独立変数のみに帰属できる。反復読み取りは信頼性、平均値、ばらつきの尺度を提供するが、すべての読み取りを同じ方向にずらす系誤差(例:天平のゼロ誤差)を取り除くものではない。

3.2

IAS基礎実習9選

試験の文脈はこれらから来る。それぞれの手法、測定項目、注意点を必ず知っておけ。

基礎実習 手法核心 測定されるもの
1 サ糖とデンプン濃度 直列希釈によるカラー標準液の作成;ベネジウ试剂を標準液と試料に加え加熱;ヨウ素でデンプンを検出 カラー標準液との比較による半定量評価
2 ビタミンC含有量 DCPIP滴定法:試料を脱色させる滴数(または体積) 終点における体積;既知のアスコルビン酸標準品と比較
3 膜透過性 等しいビートルーツ片を洗い、アルコールや温度処理中に浸漬;媒体への色素放出 カラーリメーターでの吸光度(純溶媒でゼロ調整済み)
4 酵素反応速度 基質+酵素を一定pH緩衝液および温度で管理;一定間隔でサンプルを測定 タイムコースからの初期速度;1/時間を速度の指標として
5 顕微鏡観察とスケール 準備されたスライド、低倍率から高倍率へ;ラベル付きの図;眼尺をステージマイクロメーターで較正 細胞寸法、倍率、スケール
6 根尖 squashes 先端を切り、温酸処理、洗浄、染色(トルイジンブルー、酢酸オシオン)、squash、走査および計数 各有糸分裂段階の細胞数;有糸分裂指数
7 植物の部位 根、茎、葉の横断面における平面図(細胞なし)および細胞図 組織の配列と識別
8 繊維の引張強度 同一長さの繊維に重量を増やして吊るし、切断するまで行う 切断時の質量、処理間の比較
9 抗菌性植物 無菌操作:炎によるループと容器口、種付けされたアガープレート、植物抽出液のろ紙円盤;30 °C以下の逆培養でインキュベーション 円盤周囲の抑菌帯

コア・プラクティカル9では、無菌操作があなたと培養物を保護します:バウンゼンバーナーの上昇気流付近で行い、プレートを短く開け、蓋をテープで固定する(密閉しない)、学校が承認した培養物とインキュベーション条件を使用すること。低いインキュベーション温度でも病原体が増殖できないとは限らない。

根尖スクワッシュの番号付きフロー:尖端を切断→温酸処理→洗浄→染色→スクワッシュ→高倍率で走査・カウント
根尖スクイーズの numbered flow:先端切除から高倍率での段階数カウントまで。
3.1

調査計画立案

カリキュラムの計画リストは採点基準です。満点プランには、器具、独立変数・従属変数・管理変数(各管理変数の理由を含む)を明記し、適切な器具と技術を用いた測定法、反復の適切さ、安全上の問題点及其び対策、データの活用方法(表見出しの計画、グラフ種別の選択)、そして不確かさや系誤差の要因及其降低方法を記載します。

生物学における安全は、特定のリスクとそれに対する特定の管理策です。メタノールは可燃性なので火気に近づけない;細菌は低温で培養してヒト病原菌の生育を防ぐ;鋭利なメス刀は身体から離れて使用します。

** worked example(元):CP2の計画は採点基準として用いる。 ** "2種類の果汁中のビタミンC含有量を決定する。" まず標準化を行う: DCPIP 1 cm³ を脱色するために必要な 1 % アスコルビン酸溶液の滴数(例:10)を数え、 各ジュースについても同様に反復測定を行う。理由付きのコントロール:同じDCPIP体積と 濃度(終点はこの条件に依存する);一貫して同じdropperを使用(dropサイズが 単位であるため;バイレット体積は判断を排除する);室温(反応速度)。安全上: 低危険性 — 皮膚・眼への接触を避ける。処理: 標準液で10滴必要な場合、サンプル液では5滴 ビタミンC含有量: $10/5 \times 1\% = 2\%$ — 標準液の滴数 ÷ サンプル液の滴数 により濃度がスケーリングされる。平均値列を含む反復表;言葉での比較が答えとなる。 単語での比較が答えとなる。

3.2 3.3

正確な測定の実施

測定対象に合った器具を選びます:顕微鏡の長さは格子定規、机の長さは定規、色調の強さは分光光度計、時間はストップウォッチ、小体積はシリンジまたは分目盛りピペットを使用します。器具が許容する桁数のみを報告します。ミリメートル目盛りの定規で長さを測る場合、最も近いミリメートル単位で値をとり、絶対不確かさを ± 目盛りの半分 (± 0.5 mm) とするか、保守的な慣例として ± 1目盛りとするかを明記します。

** 百分率不確かさ** $=$ (絶対不確かさ $\div$ 測定値) $\times 100\%$。ここで用いる最大不確かさモデルでは、積または商に対して百分率不確かさを加算し、和または差に対して絶対不確かさを加算する。有効数字 は測定入力と明記された不確かさによって正当化されなければならない。両方とも12.67 と12.70 は4桁の有効数字を持ち、末尾のゼロも有効である可以是 significant。どちらの値が正しいかは計算によるものであり、単にゼロがあるかどうかではない。

3.3

データ提示:表とグラフ

表はルールに従って点数を得ます。各列の見出しに quantity and unit(例:透水性 / a.u.)を記載し、単位はセル内に書かず、データを正確に入力します。任意の器具読みのために単位や単位記号を勝手に作らないでください(用紙に a.u. が指定されています)。値を入力する前に表を描いて、詰まりを防ぎます。

左:x軸のカテゴリには棒グラフ(棒の間に隙間あり)を。右:連続変数には時間経過曲線の折れ線グラフを
グラフ形式の選択:カテゴリカルな処理には棒グラフ、連続変数には折れ線グラフ。

グラフもルールに従って点数を得ます。軸には quantity and unit を記載し、x軸に独立変数を配置し、グリッドの大部分を使うようにスケールを設定し、不適切な分数や軸の途切れは避けます。点はシャープな×印でプロットし、適切な形式を選びます。カテゴリ的处理には棒グラフ(棒同士が触れない)、連続変数には折れ線グラフを使用します。ベストフィット線や曲線は傾向を示しますが、すべての点を結ぶのはデータに存在しないパターンを主張することになります。

3.3

解析:勾配と百分率

勾配は、最適合線上に描かれる大きな三角形から求めます。線分の長さの少なくとも半分以上の三角形を使用します。勾配 $= \Delta y / \Delta x$(y軸単位とx軸単位を約分した値)。補間する際はデータ点ではなく直線から値を読み取ります。

最適合線、最も急な線、最も緩やかな線における誤差バー、および勾配のための最適合線上に描かれた大きな三角形。
エラーバー:ベストフィット、最も急な線、最も緩やかな線、および大きな三角形の勾配。

百分率の家族は毎年出題されます。百分率変化: $\dfrac{\text{final} - \text{initial}}{\text{initial}} \times 100\%$。百分率差(2025の式): 差 $\div$ 2つの値の平均 $\times 100\%$。棒グラフから、ある段階の細胞の割合 $\times$ 総細胞数 $=$ その段階の細胞数 — 80 % of 98 細胞は 78.4 であり、78 個として報告されます。なぜなら、0.4 の細胞は存在しないためです。

** worked check.** カサバ最高地域33.65、最低29.64 g per 100 g。差$= 33.65 - 29.64 = 4.01$。平均$= (33.65 + 29.64)/2 = 31.645$。百分率差$= 4.01 \div 31.645 \times 100 = 12.67\%$ (13 % at 2 s.f., 12.7 % at 3 s.f.; 12.70 % is not the correct 4 s.f. rounding of this calculation).

探索

Measurement ranges and the quotient estimate

50 ± 1 mm has a 2% uncertainty. Compare it with a 100 ± 3 mm reading: the summed quotient estimate is 5%, while exact endpoint calculations reveal a slightly asymmetric range.

3.3

評価と拡張

外れ値とは、他の結果と矛盾する読み取り値であり、直線から大きく離れた点です。その処理を繰り返して確認し、黙って削除してはいけません。改善点は現実的で名指しで記述します:色比較(主観的・定性的)の代わりに分光光度計を使用(定量的・判断の除去)、純粋な溶媒でゼロ調整(系誤差のオフセットを除去)、測定範囲内にさらに多くの濃度を用いる(補間の幅を狭める)、繰り返し測定して平均と標準偏差(SD)、標準誤差または範囲を計算し、誤差バーを描く。研究を生物間のばらつきへ拡張するには、同じ条件下で異なる個体で繰り返す(同じ個体の追加測定ではない)必要があります。その後、平均とばらつきの具体的な指標を報告します。

測定範囲内で結論を述べます。グラフは初めから最後のデータ点までのモデルに対する証拠となりますが、切片がゼロであることや予期せぬオフセットは、方法やモデルに関する情報であり、単なる邪魔な要素ではありません。

3.3

筆記実習ができないこと

この単元では筆記実習のスキルを扱います。満点答案であっても、無菌操作が清潔に行われた、顕微鏡の焦点合わせに耐心を伴った、根尖の squashing が滑らかに成功したことを示すものではありません。実習体験自体は Units 1 と 2 を学習する授業内で養われ、ここでは筆記による証拠のみが評価されます。実際の実習を練習してから、それについて記述してください。

3.3

自己チェック

  1. トリフルラリン調査において、独立変数を述べ、なぜトリフルラリンのない溶媒中に幼苗を配置したかを説明せよ。
  2. 根尖圧縮標本の調製および観察の手順を順序立てて列挙し、適切な染色剤を1つ挙げよ。
  3. 98個の細胞が観察され、そのうち80%が後期に位置している。この数値はいくつか。なぜ答えは整数になるのか説明せよ。
  4. 最高領域 33.65 と最低 29.64 g per 100 g の組織。2つの値の平均を用いて百分率差を計算せよ。
  5. 生徒によるビートルーツ実験の手順に「切断、アルコール処理、色度測定」とある。採点基準で最も必要な3つの理由を追加せよ。
  6. 次のグラフ種別を選択せよ:(a) 4種類の液体の透過性、(b) 20時間にわたる時間に対する透過性。
  7. 定量的結果と半定量的結果の違いを説明し、基礎実習からそれぞれ1例を挙げよ。
  8. 反復測定が改善する要素を2つ、改善できない要素を1つ述べよ。
  9. タピオカ根一本からのデンプン変異性研究を多数の根へ拡張する方法を記述し、報告すべき統計量を1つ挙げよ。
  10. 百分率差の解答において、なぜ 12.70 % が除外され、12.67 % は採用されるのか。

回答:1 トリフルラリン(または濃度)の有無;溶媒のみ処理は対照群であり、変化はトリフルラリンによるもので溶媒によるものではないと帰結できるため; 2 先端を4–5mm切断し、希酸中で温熱処理、洗浄、染色(トルイジンブルーまたは酢酸オセイン)、圧縮、高倍率でスキャン・カウント; 3 $0.80 \times 98 = 78.4 \approx 78$個の細胞、1個分の細胞分数は観察できないため; 4 差4.01、平均31.645、$4.01/31.645 \times 100 = 12.67\%$; 5 均等な切断片(表面積 changed により色素放出量会变),まず洗浄(切断傷による漏出ではなく、自然漏出を除外); 名指しの対照群とその理由(例:温度—透過性); 6 (a) 棒グラフ、(b) 折れ線グラフ; 7 定量的=客観的に計測された値(DCPIP体積、吸光度)、半定量的=基準との比較に基づく判断(ベネディクト溶液の色見合い); 8 信頼性とばらつきの推定(平均値、標準偏差)、ゼロオフセットなどの系誤差; 9 同一条件下の根、異なる根間での測定、平均値と標準偏差(またはSEM/範囲/エラーバー)を報告; 10 値は約12.6718% → 12.67%(4桁有效数字); 12.70 %は4桁有効数字であるが丸め方が誤っており、末尾のゼロ自体が誤差ではない。

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